На бирже курсовых и дипломных проектов можно найти образцы готовых работ или получить помощь в написании уникальных курсовых работ, дипломов, лабораторных работ, контрольных работ, диссертаций, рефератов. Так же вы мажете самостоятельно повысить уникальность своей работы для прохождения проверки на плагиат всего за несколько минут.

ЛИЧНЫЙ КАБИНЕТ 

 

Здравствуйте гость!

 

Логин:

Пароль:

 

Запомнить

 

 

Забыли пароль? Регистрация

Повышение уникальности

Предлагаем нашим посетителям воспользоваться бесплатным программным обеспечением «StudentHelp», которое позволит вам всего за несколько минут, выполнить повышение уникальности любого файла в формате MS Word. После такого повышения уникальности, ваша работа легко пройдете проверку в системах антиплагиат вуз, antiplagiat.ru, etxt.ru или advego.ru. Программа «StudentHelp» работает по уникальной технологии и при повышении уникальности не вставляет в текст скрытых символов, и даже если препод скопирует текст в блокнот – не увидит ни каких отличий от текста в Word файле.

Результат поиска


Наименование:


курсовая работа Лабораторная диагностика инфекций, передаваемых половым путём

Информация:

Тип работы: курсовая работа. Добавлен: 18.11.2012. Сдан: 2011. Страниц: 10. Уникальность по antiplagiat.ru: < 30%

Описание (план):


МУЗ «Первая городская  клиническая больница скорой медицинской  помощи»
СЕВЕРНЫЙ  ГОСУДАРСТВЕННЫЙ  МЕДИЦИНСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ
КУРС  КЛИНИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ 
 
 

                    Руководитель  курса
                    Проф. Воробьёва Н.А. 
                     

Лабораторная  диагностика инфекций, передаваемых половым  путём 
 
 

                    Выполнила
                    врач-интерн КДЛ
                    Петрова Л.В.
                    г. Архангельск 
                     
                     
                     
                     
                     
                     
                     
                     

2009 г.
 

Введение 

     Эпидемиологическая  ситуация, связанная с эпидемическим  ростом заболеваний, передаваемых половым  путем (ЗППП), стала настолько серьезной, что послужила темой выделения  основных проблем современной венерологии  и лабораторной диагностики:
     1.эпидемический  рост сифилиса;
     2.появление  «новых» ЗППП (урогенитальный хламидиоз,  генитальный герпес, микоплазмозы  и т.д.), ранее в России не  регистрировавшихся;
     3.резкое  омоложение носителей;
     4.существенные  перемены в социальном и имущественном  статусе пациентов с ЗППП (повышение  финансовых возможностей) переводит  людей в группу повышенного  риска;
     5.повышение  вероятности вспышки СПИД, поскольку  при росте ЗППП, сопровождающихся  нарушением целости кожных покровов (сифилис, герпес), увеличивается  возможность проникновения вируса  в кровь;
     6.одновременное  обнаружение у пациента нескольких  инфекций с различными подходами  к диагностике и лечению, что  может привести к неадекватной  и несвоевременной терапии;
     7.трудности  регистрации и контроля ЗППП  в современных условиях (миграция  населения, локальные конфликты,  «прозрачность» границ со странами  СНГ, расширение возможностей  лечения ЗППП вне официальной  медицины).
     Лабораторная  диагностика заболеваний, передающихся половым путём, имеет большое  значение как для выявления больных, так и для установления эффективности  проведённой терапии.
     В данной работе разберём такие распространенные инфекции как сифилис, гонорея, трихомониаз  и хламидиоз, а также методы их диагностики.
 

1 Сифилис 

     Сифилис – общее инфекционное заболевание, склонное к хроническому рецидивирующему  течению с характерной периодизацией  клинических симптомов.

     Морфология, устойчивость и культуральные свойства бледных трепонем

     Возбудитель сифилиса – бледная трепонема (Treponema pallidum) – микроорганизм спиралевидной  формы с одинаковыми по высоте завитками и расстоянием между  ними. Обладает характерными движениями:
    Роторное (вокруг своей продольной оси);
    Маятникообразное (поступательное);
    Контактильное волнообразное по всему телу.
     Бледная трепонема размножается путем поперечного  деления, может существовать в 4 формах (спиралевидная, зернистая, цистная  и L-форма), что вызывает разные клинические варианты течения болезни. В очагах поражения бледная трепонема чаще располагается в межклеточных щелях, в субэндотелиальном пространстве, в пери– и эпиневрии.
     Культивирование бледных трепонем на искусственных  питательных средах требует сложных  специальных сред и анаэробной установки. Культуральные бледные трепонемы  быстро теряют свою вирулентность, патогенность и морфологические свойства. Патогенные бледные трепонемы неустойчивы  в окружающей среде, на них губительно действует высушивание. Нагревание до 60°С убивает их в течение 15 мин, а до 100°С – моментально. Бледные  трепонемы мгновенно погибают в 0,005% растворе хлоргексидина, растворе сулемы 1:1000, 1-2% растворе фенола, 70° спирте. Кислая и щелочная среда действуют на них губительно. Во влагалищном секрете, который имеет обычно кислую реакцию, трепонемы сразу теряют подвижность.

     Эпидемиология сифилиса

     Инфицирование происходит половым путем, но возможна передача интраплацентарно (врожденный сифилис), при бытовых контактах (бытовой сифилис) и, в редких случаях, при переливании крови (гемотрансфузионный сифилис). Непосредственная передача возбудителей сифилиса возможна и внеполовым путем – при поцелуях, укусах, кормлении грудью, а также при профессиональных прямых контактах медицинского персонала (гинекологов, хирургов, патологоанатомов, лаборантов и др.).
     Важными условиями заражения сифилисом  являются наличие в материале  от больного достаточного числа вирулентных  трепонем, нарушение целости кожного  покрова или слизистых оболочек.

     Общее течение сифилиса

     В течение сифилиса принято различать следующие стадии:
     1) инкубационный,
     2) первичный,
     3) вторичный,
     4) третичный.
     Инкубационный период – 3 – 6 мес. Первичный период разделяют на серонегативный и серопозитивный, вторичный – на свежий, скрытый и рецидивный, третичный – на активный и скрытый.
     Первичный период сифилиса (syphilis primaria) – начальная  стадия болезни – манифестирует  образованием на месте внедрения  бледной трепонемы – первичного аффекта (первичной сифиломы, или  твердого шанкра), обусловленного скоплением бледных трепонем. Проникновение  трепонем, распространение их по лимфатическим  пространствам, в эндо– и периневрии сопровождается продромальными симптомами. Могут выявляться позитивные, но слабо положительные РИФ, РСК, РВ. Необходимо повторное серологическое обследование. Таким образом, первичный период подразделяется на 2 равные стадии: серонегативный, протекающий не более 3 - 4 нед, и серопозитивный, длящийся 3 - 4 нед, завершающийся симптомами вторичного периода при отсутствии лечения.
     Вторичный период сифилиса (syphilis secundaria) манифестирует изменениями на коже и слизистых оболочках. Генерализация инфекции проявляется множественными воспалительными процессами в различных органах и тканях. Начальным сигналом служит сопутствующий твердому шанкру регионарный аденит, трансформирующийся в полиаденит, сопровождающийся лихорадочным состоянием, недомоганием, астенизацией, болями в костях, суставах, головными болями, анемией, лейкоцитозом, увеличением СОЭ. Формирующаяся органная патология проявляется гепатитом, панкреатитом, нефрозонефритом, или поражением опорно-двигательного аппарата, нервной системы.
     Вторичный период сифилиса варьирует по течению  от 2 до 3 – 5 лет при отсутствии лечения. Подразделяется на вторичный свежий (syphilis secundaria recens), скрытый, или латентный (syphilis secundaria latens), который с целью проведения необходимых эпидемиологических мероприятий делят на скрытый ранний и скрытый поздний. Заключительным этапом вторичного периода сифилиса является рецидивный сифилис (syphilis secundaria recidiva).
     Третичный период сифилиса (syphilis tertiaria) характеризуется стадийным течением проявлений инфекции, вследствие чего его подразделяют на третичный скрытый и третичный активный. В возникновении третичного сифилиса большое значение придается травме (физическая, механическая, медикаментозная, психологическая и др.), а также факторам, ослабляющим иммуноэкологические защитные силы организма (очаги хронической инфекции, интоксикации, соматические заболевания, алкоголизм, наличие дополнительной венерической инфекции типа хламидиоза, микоплазмоза). В позднем третичном периоде, помимо позднего висцерального сифилиса, возможны явления поздних форм нейросифилиса (спинная сухотка, прогрессивный паралич).

     Лабораторная диагностика  сифилиса

     Наряду  с традиционными разрабатываются  новые более чувствительные и  специфические методы. Особенности  биологии бледной трепонемы обусловливают  вариабельные ответы организма-хозяина, что клинически выражается в многофазности течения заболевания и сложности серологических реакций.
     Методы  обнаружения бледных трепонем традиционно  подразделяют на прямые (заражение  животных, микроскопия в темном поле и т.д.) и непрямые серологические тесты для выявления AT. В свою очередь, серологические методы представлены двумя классами:
     1) Нетрепонемные тесты, определяющие AT к липоидным АГ тканей хозяина  или возбудителя (VDRL и RPR – плазмореагиновый  тест); реактивность в этих местах  обычно указывает на повреждение  тканей и не всегда специфична  в отношении сифилиса. Простота  выполнения и низкая стоимость  этих тестов позволяет использовать  их как отборочные реакции  для постановки предварительного  диагноза сифилиса при соответствующих  клинических симптомах.
     2) Трепонемные тесты, в которых  используются специфические АГ  трепонем, обязательны для подтверждения  диагноза (микрогемагглютинационный  тест на AT к бледной трепонеме,  РПГА и РИФ). Они являются более  сложными и дорогостоящими, чем  тесты 1-й группы.
     В перспективе предполагается использование  новых прямых методов определения  возбудителя – ИФА и ПЦР, клинические  испытания которых дают хорошие  результаты при диагностике врожденного  сифилиса и нейросифилиса.
     Прямая  визуализация патогенных трепонем является широко используемым и доступным  методом бактериологического их обнаружения. Он заключается в исследовании возбудителя сифилиса непосредственно  в тканевой жидкости из высыпных элементов, подозрительных на сифилитические проявления. Тканевую жидкость, полученную способом аппликации, скарификации или пункции, исследуют в наивном препарате в темном поле зрения или в окрашенных препаратах (по Романовскому-Гимзе, по Бурри или после импрегнации по Фонтану и Морозову). Трепонемы можно выявить в экссудате из очагов поражения при первичном, вторичном свежем, вторичном рецидивном сифилисе, в пунктате, полученном из лимфатических узлов, в соке плаценты при родах. Отсутствие трепонем в типичных очагах поражения может быть обусловлено длительностью существования очага или предварительным лечением пациентов.

     Серологическая диагностика

     При серологическом обследовании на сифилис  применяется комплекс реакций: стандартные (КСР) – реакция Вассермана с двумя-тремя антигенами и две осадочные реакции (Кана и цитохолевая); при необходимости рекомендуется постановка более чувствительных и специфических реакций РИБТ и РИФ. Особенно велико значение РИБТ и РИФ для распознавания ложноположительных результатов стандартных серологических реакций и ретроспективной диагностики сифилиса.
     КСР позволяет выявить значительное число больных сифилисом в разных стадиях заболевания. При замене неспецифических антигенов трепонемными и при постановке серологических реакций на холоде (реакция Колмера) можно повысить процент выявления и увеличить специфичность реакции. Применение в качестве обязательных антигенов кардиолипинового антигена, трепонемного озвученного антигена из протеиновой фракции патогенных или культуральных трепонем дает возможность судить об иммунном состоянии больного сифилисом при постановке диагноза, определении результатов терапии и критерия излеченности (в совокупности с другими показателями). Кроме того, серологическое обследование проводится лицам, поступающим на работу в детские учреждения, на пищевые предприятия и ряд других производств при периодическом обследовании декретированных контингентов. Обязательному серологическому обследованию подвергаются доноры, а также больные терапевтических, неврологических, психиатрических и других стационаров.
     Для выполнения комплекса серологических реакций требуется высококвалифицированный  персонал лабораторий, соответствующее  лабораторное оборудование и значительное количество ингредиентов. Многочисленность серологических реакций объясняется  тем, что доказана антигенная мозаичность  бледных трепонем, а в связи  с этим и наличие в сыворотке  крови больного сифилисом соответствующей  множественности антител (реагины, комплементсвязывающие и полисахаридные антитела, агглютинины, иммобилизины, антитела, вызывающие иммунную флюоресценцию, и др.). В каждой стадии сифилиса преобладают  те или иные антитела и, следовательно, реакции с одними антителами могут  быть уже положительными, а с другими  – еще отрицательными. Кроме того, относительная специфичность стандартных  серореакций побуждает в целях  избежания диагностических ошибок пользоваться не одной из этих реакций, а их комплексом. Несмотря на такой  комплексный подход при серологическом обследовании пациента, следует помнить, что в ряде случаев даже весь комплекс может давать ложноположительный, неспецифический, результат. Ложноположительные серологические реакции в крови наблюдаются  при малярии, сыпном и возвратном тифе, лепре, бруцеллезе, пневмонии, скарлатине, при злокачественных новообразованиях, во время менструаций, за 2 нед до родов и в течение 3 нед после  родов, после приема алкоголя, жирной пищи, некоторых лекарственных препаратов, при хронических гнойных процессах, болезнях печени и др. Установлено, что с увеличением возраста пациентов  возрастает количество неспецифических  ложноположительных результатов стандартных  серореакций. Все это заставляет весьма осторожно относиться к показателям  серологического обследования пациентов  и считать серореакций ценной, но вспомогательной методикой, подтверждающей данные клинической картины, результаты других лабораторных исследований (на бледную трепонему, спинномозговой жидкости), результаты конфронтации.
    Реакция Вассермана (РВ)
     Основана на феномене связывания комплемента. В постановке реакции используют как специфические антигены из бледных трепонем, так и неспецифические антигены (экстракты из органов здоровых животных, например, мышцы бычьего сердца). Связывание комплемента производится комплексом (липоидный антиген и реагин испытуемой сыворотки). Для индикации образовавшегося комплекса применяют гемолитическую систему (эритроциты барана и гемолитическая сыворотка). При постановке РВ с кардиолипиновым антигеном ее чувствительность возрастает.
     В связи с большим объемом профилактических обследований и сложностью выполнения КСР в настоящее время широко применяется экспресс-метод серодиагностики сифилиса, когда не требуется брать кровь из вены.
    Ускоренный  метод серодиагностики сифилиса
     Техника постановки реакции с плазмой. Кровь  в пробирке при стоянии разделяется  на два слоя. Нижний содержит эритроциты, а верхний – плазму. Пастеровской пипеткой отсасывают плазму, стараясь не захватить эритроциты. При недостаточном  количестве плазмы пробирку с кровью следует отцентрифугиоовать в течение 5 - 10 мин при 1000 - 2000 об/мин. В лунку пластинки из органического стекла вносят кровь от 1 больного и нумеруют лунку соответственно составленному списку. В каждой лунке к 2 - 3 каплям плазмы добавляют по 1 капле эмульсии антигена; капли перемешивают, и смесь встряхивают в течение 5 мин, затем во все лунки добавляют по 1 капле изотонического раствора натрия хлорида; смесь перемешивают покачиванием и оставляют при комнатной температуре на 5 мин. В плазме, полученной от больного сифилисом, появляются хлопья разной степени интенсивности, расцениваемые как положительный результат (3+, 4+), слабо положительный (2+, 1+). При отсутствии сифилиса иногда может быть слабо выраженный флокулят, поэтому учет результатов следует производить, ориентируясь на характер реакции в контролях. Поскольку микрореакция носит отборочный характер, при получении положительных результатов сыворотку крови исследуют в КСР, а при необходимости – в РИБТ и РИФ.
    Реакция с липоидным антигеном (VDRL)
     Одним из лучших стандартных методов, в  которых используются липоидные  антигены, является рекомендуемая ВОЗ  реакция VDRL. Название этой реакции происходит от заглавных букв учреждения, где  она была разработана, – Venereal Diseases Research Laboratory в Атланте. Антиген добавляют к инактивированной сыворотке больного, помещаемой на предметное стекло, которое вращают в течение 4 - 5 мин при комнатной температуре и сразу регистрируют результат: наличие в сыворотке реагинов вызывает макроскопически видимую флокуляцию. Реактоспособность сыворотки в реакции VDRL выявляется примерно через 4 нед после заражения сифилисом. Количественную оценку циркулирующих антител получают путем разведения сыворотки перед постановкой реакции в геометрической прогрессии: 1:2, 1:4, 1:8, 1:16. Ложноположительные результаты могут обусловливаться аутоантителами при заболеваниях, протекающих с нарушениями иммунитета (красная волчанка, ревматизм, болезнь Шегрена, дисгаммаглобулинемия), а также при заболеваниях, связанных с усиленным разрушением клеточных ядер (малярия, пситтакоз, вирусная пневмония, карцинома).
     Главными  достоинствами реакции VDRL являются:
    низкая стоимость, легкость постановки,
    быстрое получение результатов с довольно высокой чувствительностью,
    специфичностью, хотя и меньшей, чем в реакции с трепонемным антигеном.
    Реакции иммунофлюоресценции
     Все большее значение приобретают специфические серологические реакции РИФ и РИБТ.
     Принцип РИФ основан на выявлении флюоресцирующих  антител, так как меченные флюорохромом антитела не теряют способности соединяться  с соответствующим антигеном  и тем самым обусловливают  свечение препаратов в сине-фиолетовых лучах, источником которых является ртутно-кварцевая лампа.
     Отличительной чертой РИФ, по сравнению со стандартными серореакциями, является более высокая чувствительность (поэтому она бывает положительной у ряда больных в первичном серонегативном периоде сифилиса) при сохранении высокой специфичности. Однако, РИФ уступает по специфичности РИБТ, хотя по технике постановки она значительно проще.
     Реакция ставится в нескольких модификациях: РИФ-ц, РИФ-200 и РИФ-абс. Считается, что РИФ-ц более чувствительна, а РИФ-200 и РИФ-абс – более специфичны.
     Реакция ставится непрямым методом в 2 фазы. В первой фазе реакции на антиген  наносится испытуемая сыворотка  крови. Если в ней имеются соответствующие  антитела, то образуется комплекс антиген  – антитело. Для выявления образовавшегося  комплекса проводится вторая фаза реакции, при которой его обрабатывают меченной флюорохромом иммунной кроличьей  сывороткой (против сывороточных глобулинов человека)
     Полученный  во второй фазе комплекс антиген-антитело определяется с помощью люминесцентной микроскопии. Если свечения антигена нет, то это указывает на отсутствие в испытуемой сыворотке крови соответствующих антигену антител.
     Наиболее  ценной модификацией РИФ является РИФ-200, основным назначением которой считается не ранняя серодиагностика сифилиса, а распознавание неспецифических результатов КСР и серодиагностика других форм сифилитической инфекции, в том числе и скрытого сифилиса. При установлении излеченности сифилиса решающим является отрицательный результат РИФ-200. не обладает абсолютной специфичностью, поэтому вопрос о наличии или отсутствии заболевания должен решаться на основании совокупности клинических, серологических и других данных.
     Техника постановки РИФ-200. Из антигена готовят препараты на тонких, обезжиренных предметных стеклах, на обратной стороне которых обозначены кружки диаметром 1 см. Антиген в пределах кружка, и высушенный на воздухе мазок фиксируют в течение 5 мин в чистом ацетоне. После фиксации стекла помещают во влажную камеру. Инактивированные испытуемые сыворотки крови разводят в 200 раз изотоническим раствором натрия хлорида. Для проведения первой фазы реакции на помещенные во влажную камеру препараты наносят испытуемые сыворотки. После этого влажную камеру закрывают и помещают в термостат при +35°С на 30 мин. По истечении этого времени препараты вынимают из влажной камеры, промывают в течение 10 мин в двух порциях изотонического раствора натрия хлорида и помешают в штатив для высушивания. После высушивания препараты вновь помещают во влажную камеру и наносят по капле разведенной по титру флюоресцирующей сыворотки против глобулинов человека. Вторую фазу реакции проводят при комнатной температуре, после чего препараты 10 мин промывают в изотоническом растворе натрия хлорида, высушивают и монтируют для люминесцентной микроскопии. Монтирование препаратов заключается в том, что на них стеклянной палочкой наносят маленькие капли забуференного глицерина, накрывают их тонкими, обезжиренными предметными стеклами, на которые стеклянной палочкой наносят по капле нелюминесцирующее иммерсионное масло. Исследование препаратов производят в люминесцентном микроскопе. Степень свечения трепонем, зависящая от количества антител в сыворотке крови, обозначается плюсами. Свечение считается положительным, если его оценивают как 4+, 3+ и 2+.
    Реакция иммунофлюоресценции-абсорбции с БТ (FTA-ABS)
     Используемый  для реакции антиген представляет собой взвесь бледных трепонем из пораженных сифилисом яичек кролика, фиксированную ацетоном на предметном стекле. Можно также использовать лиофилизированные бледные трепонемы  после их восстановления в изотоническом  растворе натрия хлорида. Инактивированную сыворотку инкубируют с сорбентом  для абсорбирования неспецифических  групповых антител. Затем сыворотку  помещают пипеткой на антиген, находящийся  на предметном стекле. Специфические  антитела связываются бледными трепонемами. После промывания к трепонемам на предметном стекле добавляют комплекс античеловеческого глобулина с флюоресцентным красителем. Этот комплекс связывается с человеческим глобулином на оболочке клеток бледных трепонем и может быть идентифицирован методом флюоресцентной микроскопии. По прошествии не менее 2 ч по степени флюоресценции сыворотку можно классифицировать как нереактоспособную, пограничную или реактоспособную. Реакция, обозначаемая двумя плюсами или больше, свидетельствует об инфекции.
     Появления реактоспособности можно ожидать  примерно в начале 3-й недели после заражения, а у нелеченных больных она обнаруживается постоянно. Сыворотка остается реактоспособной и через несколько лет после успешного лечения раннего сифлиса, а у больных, получивших адекватное лечение при позднем сифилисе, – на протяжении десятилетий.
     Главными  достоинствами реакции FTA-ABS являются:
    высокая специфичность и чувствительность,
    быстро наступающая реактоспособность.
     Положительная FTA-ABS может иметь решающее значение для диагностики в сомнительных случаях, особенно при положительных реакциях VDRL или автоматизированной реакции микрогемагглютинации (АМНА-ТР), используемых для скрининга.
    Реакция 19S IgM-FTA-ABS
     При идентификации антител IgM к бледным  трепонемам реакцией FTA-ABS с использованием конъюгата анти-IgM в качестве реагента выявлялись ложноположительные и ложноотрицательные результаты. Реакция 19S IgM-FTA-ABS в этом отношении является наиболее точным, специфичным методом. В целях отделения крупных молекул 19S IgM от более мелких молекул 7S IgM используется методика ультрацентрифугирования, адсорбирования на белке А и гель-фильтрация с применением ультрагеля АсА 34 с трисбуфером при рН 8,0 на колонке К 26/100 при объеме геля 300 мл, скорости потока 27 мл/ч и +240С. В этой системе первый пик элюата содержит фракцию 19S IgM. В процессе фильтрования отделяются непрочные иммунные комплексы. Использование фракции 19S IgM в реакции FTA-ABS обеспечивает высокую специфичность, устраняя возможность неспецифических, ошибочных результатов.
    Реакция иммобилизации бледных трепонем (РИБТ)
     Основное  назначение – распознавание ложноположительных результатов при постановке стандартных серологических реакций. Это важно у больных с отсутствием клинических проявлений активного сифилиса или имеются поражения внутренних органов или нервной системы. Роль в распознавании ложноположительных результатов стандартных серологических реакций у беременных.
     Сущность  реакции заключается в потере подвижности бледными трепонемами  в присутствии иммобилизинов  испытуемой сыворотки и активного  комплемента. Реакция ставится в условиях анаэробиоза.
     Иммобилизины  появляются в сыворотке крови  больных позднее, чем другие антитела, и, следовательно, РИБТ становится положительной  позже, чем стандартные серореакции  и РИФ.
     Оценка  реакции:
    при иммобилизации до 20% бледных трепонем реакция считается отрицательной;
    при иммобилизации от 21 до 50% бледных трепонем – слабоположительной;
    при иммобилизации от 51 до 100% – положительной.
     Положительный результат РИБТ наблюдается у  больных с тропическими трепонематозами (пинта, беджель). Иногда РИБТ дает ложноположительный результат при саркоидозе, эритематозе, туберкулезе, циррозе печени, атеросклерозе  и др. С возрастом пациентов  число ложноположительных результатов  РИБТ увеличивается.
     Упрощенная  методика РИБТ. Пробирки с сыворотками расставляют в штативе. В журнале нечетными номерами отмечают все смесители, в которые добавлялся активный комплемент (опыт), и четными номерами – куда добавлялся инактивированный комплемент (контроль). Комплемент добавляют не для каждой сыворотки отдельно, а готовят «коктейль», т.е. предварительно соединяют комплемент с антигеном в нужных соотношениях для всех сывороток. Взвесь трепонем в питательной среде из расчета по 0,3 мл на каждую сыворотку делят на 2 части и добавляют в один флакон активный комплемент, а в другой - инактивированный.
     В стерильный смеситель для лейкоцитов набирают сыворотку до метки 1. Конец  смесителя стерильной ваткой вытирают от сыворотки, оставшейся на стенках. Т.к. при попадании положительной сыворотки в антиген в последующих сыворотках могут быть получены неверные результаты. Во избежание загрязнения при больших постановках разливают антиген параллельно в два флакона. После этого набирают взвесь трепонем с активным комплементом до метки 2. В другой смеситель набирают взвесь трепонем с инактивированным комплементом. Оба конца каждого смесителя закрывают резиновым кольцом, как для транспортировки крови, взятой для клинического исследования, и встряхивают для смешивания. Во избежание возможного влияния некоторых сортов резины места ее соприкосновения со смесителем следует смазывать вазелиновым маслом. Можно не закрывать концы смесителя резиновыми кольцами, а заливать их парафином с температурой плавления выше 50°С. Благодаря тому, что оба конца смесителя закрыты, прекращается доступ воздуха, взвесь трепонем находится в относительно анаэробных условиях.
     Для контроля набирают в те же смесители  все взвеси с активным и инактивированным комплементом, а также одну взвесь без комплемента. Ставят реакцию  иммобилизации с сыворотками, заведомо отрицательными и заведомо положительными, оставшимися от прошлой постановки.
     Заполненные и закрытые смесители помещают в  специальный штатив. На каждый смеситель  надевают нумерованные кольца из картона. Смесители помещают в термостат  при +35°С на 18-20 ч. Для регистрации опыта через 18 ч смесители вынимают из термостата попарно - опыт и контроль.
     Подсчет подвижных и неподвижных трепонем. По количеству смесителей в штативе  расставляют и нумеруют пробирки. Содержимое смесителя выливают в  соответствующую нумерованную пробирку, перемешивают тем же смесителем с  надетой на него пипеткой и наносят  каплю взвеси с активным комплементом на левую сторону предметного  стекла, а на правую сторону –  с инактивированным комплементом той  же сыворотки; посредине стекла ставят номер сыворотки. Капли накрывают  покровными стеклами. Капли должны быть небольшими, иначе трепонемы  «плывут» с током жидкости, и тогда  суждение об их подвижности и подсчет  затруднительны. Учет результатов реакции  начинают с инактивированного комплемента. Подсчитывают 25 - 30 трепонем и отмечают, какое количество среди них подвижных и какое – неподвижных. Если в контроле содержится меньше 17 подвижных трепонем из 25 сосчитанных, то такой опыт непригоден и его следует повторить. В пробирках с инактивированным комплементом отсутствие подвижности трепонем объясняется не иммобилизацией, а токсичностью сыворотки или недостаточно высоким качеством среды сохранения.
     При определении подвижности трепонем следует учесть, что движения трепонем различны. Они могут обладать весьма активной подвижностью, особенно отчетливы сгибательные движения, а иногда отмечаются только винтовые движения. Иногда трепонема лежит как бы неподвижно, но если присмотреться, то видно, что через некоторое время она начинает активно двигаться. Следует также уметь отличать активные движения трепонемы от движения с током жидкости.
     В пробирках, в которые вылили содержимое смесителей, в дальнейшем определяют остаточный комплемент (во всех пробирках  опыта и контроля). Пробирки с  инактивированным комплементом служат как бы контролем для сравнения  происшедшего гемолиза.
     Расчет  специфической иммобилизации производят по следующей формуле:
     (Число  подвижных трепонем в контроле  – число подвижных трепонем  в опыте) / Число подвижных трепонем  в контроле * 100.
     Реакция иммобилизации считается положительной, когда % иммобилизации выше 51; от 31 до 50% – слабоположительной; сомнительной – от 21 до 30% и отрицательной – ниже 20%.
     Опыт  с сомнительными, а иногда и слабоположительными  результатами следует повторить; при  этом можно получить или положительный, или отрицательный результат. Неудовлетворительным считается результат, если имеется  большое бактериальное загрязнение  или отмечается токсичность сыворотки. Такие исследования следует повторить  с новой порцией сыворотки. Целесообразно  также подвергать повторному исследованию все сыворотки, давшие полное расхождение  со стандартными серологическими реакциями. Эти сыворотки заслуживают особого  внимания, так как в таких случаях  результаты РИБТ могут дать опору  для суждения о наличии или  отсутствии сифилиса.
     При постановке опыта обращают внимание на соблюдение стерильности и чистоты  посуды. Она должна быть свободна от примеси веществ, могущих оказать  вредное влияние на жизнеспособность трепонем. Смесители и всю посуду моют сначала холодной водой, затем  горячей, споласкивают дистиллированной водой, не применяя никаких дезинфицирующих средств. Смесители стерилизуют в автоклаве, подсушивают в сушильном шкафу.
    Реакция иммунного прилипания бледных трепонем (РИП)
     Основана на том, что вирулентные тканевые трепонемы, сенсибилизированные сывороткой больного сифилисом, в присутствии комплемента и эритроцитов прилипают к поверхности эритроцитов и при центрифугировании увлекаются с ними в осадок, исчезая из надосадочной жидкости.
     Для постановки реакции используются: испытуемая сыворотка, антиген, комплемент, эритроциты донора, изотонический раствор натрия хлорида. Кровь берут из вены и  обрабатывают, как для реакции  Вассермана. Сыворотку крови инактивируют в водяной бане при +55-56°С в течение 30 мин. В качестве антигена используют взвесь бледных трепонем штамма Никольса.
     Техника постановки. Предварительно для реакции  разводят все ингредиенты. На дно  центрифужной пробирки микропипеткой  наливают 0,05 мл испытуемой сыворотки, добавляют 0,35 мл смеси комплемента (0,05 мл) с антигеном (0,3 мл). Пробирки энергично встряхивают в течение 30 сек. и оставляют при комнатной температуре на 30 мин; затем во все пробирки добавляют по 0,1 мл взвеси эритроцитов, пробирки энергично встряхивают в течение 30 сек. и оставляют в термостате при +37°С на 30 мин, после чего все пробирки центрифугируют при 1000 об/мин в течение 3 мин.
     Учет  результатов проводят путем подсчета бледных трепонем в надосадочной жидкости. Для этого 0,01 мл надосадочной жидкости микропипеткой наносят  на предметное стекло, покрывают покровным  стеклом и в темном поле зрения подсчитывают число бледных трепонем в 10 полях зрения. При просмотре  препарата под микроскопом учитываются  только те бледные трепонемы, которые  могут свободно перемещаться с током  жидкости. Те же трепонемы, которые  попали в поле зрения с током жидкости дополнительно, после начала подсчета («приплывшие»), в этом поле зрения уже не учитываются. Процент прилипания бледных трепонем исчисляется по формуле: 

     (100 – Оn) /K * 100, 

     где On – число бледных трепонем в 10 полях зрения из опытной пробирки;
     К – число бледных трепонем в 10 полях зрения из контрольной пробирки.
     При иммунном прилипании бледных трепонем, равном 0 - 20%, результат расценивается как отрицательный; 21 - 30% - сомнительный; 31 - 50% - слабоположительный и при 51 - 100% - положительный.
     В ответе результат реакции выписывается без указания процента. В случае несовпадения результатов РИП с данными других реакций необходимо провести повторный учет результатов РИП с вновь приготовленным препаратом, повторить постановку реакции с этой же сывороткой крови, при необходимости повторить РИП с сывороткой крови, взятой у обследуемого повторно.
     РИП следует применять в следующих  случаях: при диагностике тех  форм сифилиса, когда на основании данных анамнеза, клиники, результатов КСР и других исследований не удается подтвердить диагноз заболевания; при дифференцировании неспецифических результатов КСР; при контрольном наблюдении после окончания лечения. Специфичность и чувствительность РИП близки РИБТ и РИФ.
    Реакция гемагглютинации с бледными трепонемами (ТРПГА)
     Принцип метода заключается в следующем: формалинизированные тонизированные бараньи эритроциты соединяются  с экстрактом из патогенных бледных  трепонем. Образующийся комплекс, который  фиксируется на эритроцитах, составляет корпускулярный антиген. При соединении антигена с сывороткой, содержащей гомологичные антитела, образуется иммунный комплекс, который вызывает агглютинацию эритроцитов.
     Предварительный результат может быть зарегистрирован  после инкубации в течение 3 - 4 ч. Появление равномерной розовой окраски указывает на положительный результат, а агглютинат (преципитат) темно-красного цвета в виде пятна или кольца является показателем осаждения эритроцитов. ТРПГА-тест, выполняемый вручную или автоматизированным методом, является специфичным и чувствительным тестом.
    Реакция микрогемагглютинации с бледными трепонемами (МНА-ТР)
     Является вариантом ТРПГА. Ее ставят на пластинках для микротитрования. Она требует по сравнению с ТРПГА меньшего количества сыворотки, адсорбирующего разбавителя и антигена. Окончательный результат получают после 4 ч инкубирования сыворотки. Автоматизированная реакция микрогемагглютинации с бледными трепонемами (АМНА-ТР) благодаря автоматизации процессов заполнения тест-пластин и разведения сыворотки проще и обходится дешевле, чем реакция АМН-ТР. Пригодна при массовых обследованиях на сифилис.

     Клиническая оценка результатов серологических реакций

     При первичном серонегативном периоде  сифилиса бывают положительными РИФ  и реакция Колмера как наиболее чувствительные серореакции. Однако это  не является основанием для постановки таким больным диагноза первичного серопозитивного сифилиса. У ряда больных в этом периоде бывает изолированный положительный результат  при постановке реакции Вассермана с трепонемными или с кардиолипиновым  антигенами. В конце 3-й или в течение 4-й недели после появления первичной сифиломы становятся положительными стандартные серологические реакции - с этого момента начинается первичный серопозитивный период сифилиса. На 1 – 2-й неделе первичного серопозитивного сифилиса отмечается увеличение степени позитивности серореакции (1+, 2+, 3+) и нарастание титра реагинов (1:5, 1:10, 1:20). РИФ и реакция Колмера у всех больных дают резко положительный результат, но РИБТ отрицательная или процент иммобилизации очень низок. Диагноз первичного серопозитивного сифилиса ставится тем больным, у которых осадочные реакции и реакция Вассермана с неспецифическими антигенами дали однократный слабоположительный результат. При дальнейшем течении первичного сифилиса все серологические реакции становятся резко положительными (4+); титр реагинов достигает 1:80, 1:160, РИФ продолжает быть резко положительной, но РИБТ у большинства больных еще остается отрицательной или может стать слабоположительной.
     При вторичном свежем сифилисе резко  положительный результат по всем стандартным серологическим реакциям наблюдается почти в 100% наблюдений; титр реагинов наиболее высок - 1:160; 1:240 или 1:320. РИФ - 4+; РИБТ дает положительнй результат более чем у половины больных, однако процент иммобилизации трепонем невысок (40 - 60%).
     При вторичном рецидивном сифилисе положительный  результат по стандартным серологическим реакциям отмечается в 96 - 98%. Отрицательные результаты объясняются малосимптомным рецидивным течением, наличием астенизации, сочетанием сифилиса и ВИЧ-инфекции. РИБТ дает положительный результат у 85 - 90% больных при выраженной степени иммобилизации: 80 – 90 - 100%.
     Третичный сифилис характеризуется положительными результатами по стандартным серологическим реакциям в 50 - 90% наблюдений и положительной РИБТ у 92 - 100% пациентов с высоким процентом иммобилизации.
     Диагноз скрытого серопозитивного сифилиса устанавливают только по положительным  серореакциям в крови с обязательным подтверждением их по РИБТ, т.к. только РИБТ (в меньшей степени РИФ) позволяет отдифференцировать ложноположительные серореакции (даже с позитивностью в 2+ или 3+) от истинно положительных.
     Разные  формы сифилиса нервной системы  и висцерального сифилиса имеют  различную частоту и выразительность  стандартных серореакции. Так, прогрессивный  паралич в 100% случаев сопровождается резко положительными всеми стандартными серологическими реакциями. Сифилис  сосудов мозга, спинная сухотка, сифилитическое поражение сердечнососудистой системы сопровождаются положительными серореакциями лишь в 40-50-60%. Однако РИБТ почти при всех перечисленных патологических состояниях дает резко положительный результат (90 - 100% иммобилизации).
     При диагностировании врожденного сифилиса в первые 2 мес. после рождения стандартные серологические реакции у ребенка не определяют, т.к. они могут быть положительными за счет пассивной передачи реагинов через плаценту. По этой же причине не имеет значение и положительный результат РИБТ. Пассивно переданные от матери ребенку имобилизины самопроизвольно исчезают в течение 6 мес. после рождения. Если ребенок инфицируется незадолго до родов, то в этом случае РИБТ будет еще отрицательной, несмотря на наличие в организме ребенка сифилитической инфекции.
     При врожденном сифилисе детей грудного возраста с активными проявлениями стандартные серореакции могут  быть отрицательными в 1% наблюдений.
     При врожденном сифилисе раннего детского возраста отрицательные стандартные  серореакции варьируют от 15 до 20%, но в этих случаях РИБТ дает положительные  данные у 90 - 98% детей.
     При позднем врожденном сифилисе при  наличии активных проявлений стандартные  серореакции констатируются лишь у 70 - 80% обследованных, но РИБТ четко положительная у 100% больных с высоким титром иммобилизинов.

     Современные усовершенствованные  серореакции с использованием принципов иммуноферментных констант

     Несмотря  на значительное количество тестов для  серодиагностики сифилиса, их высокую  чувствительность и специфичность  имеется ряд состояний при  которых данные серодиагностики  требуют проверки и дополнительных исследований. Например, у пациентов, полноценно леченных по поводу сифилиса, иногда длительное время остаются положительными серореакции. Это объясняется состоянием серорезистентности, которое до настоящего времени не получило научной трактовки. Затрудняется также дифференциальная диагностика неведомого сифилиса от рецидива процесса и реинфекции. С  целью разработки информативных  вариантов серореакции были использованы детали антителообразования у больных  сифилисом, с предложением и исследованием  вариантов серореакции: метод иммуноферментного  анализа (ИФА), метод иммуноблоттинга (IgM-серология), полимеразная цепная реакция (ПЦР).

     Иммуноферментный  анализ

     Широко используется для диагностики сифилиса. Принцип реакции заключается в соединении сифилитического антигена, сорбированного на поверхности твердофазного носителя, с антителом испытуемой сыворотки крови и выявления специфического комплекса антиген-антитело с помощью антивидовой иммунной сыворотки, меченной ферментом. Взаимодействие фермента с субстратом дает цветную реакцию, интенсивность которой зависит от количества связанных сывороточных антител.
     Тест  для выявления IgG - тест-ловушка использует в качестве антигена очищенные патогенные трепонемы. У больных с вторичным, ранним и поздним сифилисом и нейросифилисом и у реинфицированных пациентов чувствительность теста 100%. Тот же принцип ловушки для антител применен с целью определения сывороточных IgM.

     Метод иммуноблоттинга

     При проведении иммуноблоттинга трепонемы  подвергаются электрофорезу с разделением  белковых иммунодерминант на нитроцеллюлозе. Затем производится обработка разделенных  точек исследуемой сыворотки  и антителами к IgG либо IgM, меченными  ферментами или радиоактивными веществами.
     lgM-серология.
     При изучении антителообразования в  организме больных сифилисом  установлено, что первыми после  заражения вырабатываются специфические IgM, выявляемые уже на 2-й нед. после заражения и достигающие максимальной концентрации в крови на 6 - 9 нед. Через 6 мес. после окончания терапии у большинства больных в крови они не определяются, На 4-й нед. после инфицирования организм начинает продуцировать специфические IgG. Этот вид иммуноглобулинов в наибольшем количестве определяется через 1 - 2 года после заражения. Заслуживает особого внимания то, что специфические IgM перестают вырабатываться при исчезновении из организма антигена, а секреция IgG продолжается клонами клеток памяти. Кроме того, крупные молекулы IgM не проходят через плаценту от матери к плоду, в связи с чем по их наличию у ребенка судят об его инфицировании бледной трепонемой.
     Ввиду того, что концентрация в крови  специфических IgM закономерно снижается  после эффективного лечения, рост титра  этих антител может служить вспомогательным  признаком наличия рецидива заболевания  или реинфекции.

     Полимеразно цепная реакция (ПЦР)

     Метод заключается в многократном увеличении (амплификации) количества ДНК выявляемого  микроорганизма. Разработка вариантов  ПЦР для диагностики сифилиса обусловлена недостаточностью стандартных  тестов при раннем серонегативном, врожденном сифилисе и нейросифилисе. ПЦР является превосходным методом  для диагностики сифилиса при  небольшом количестве трепонем в  исследуемом материале. Достоинством ПЦР является возможность автоматизации реакции путем заданного циклического температурного режима для определяемой за счет меченных праймеров цветной реакции. Остается невыясненным вопрос – отражает ли наличие трепонемной ДНК присутствие жизнеспособных трепонем или это могут быть остатки погибших микроорганизмов, содержащие способную к амплификации ДНК.
     Применение  ПЦР может иметь большое значение при диагностике врожденного  сифилиса, нейросифилиса, первичного серонегативного  сифилиса, а также у больных, у  которых диагностика сифилиса с  помощью обычных серологических реакций затруднена из-за инфицирования ВИЧ.

     Исследование спинномозговой жидкости

     Особое  внимание уделяется исследованию спинномозговой жидкости для определения пораженности сифилисом нервной системы, как  критерий качества лечения у лиц  с патологическими изменениями  в ликворе до начала лечения и  как один из критериев излеченности больных.
     Ликвор получают при люмбальной пункции. В пробирку собирают 7 - 8 мл (но не более 10 мл) ликвора. Это количество распределяют в две пробирки, одну из которых направляют в клиническую лабораторию, а другую – в серологическую.
     В клинической лаборатории исследуют  цитоз, содержание белка, глобулиновые реакции Панди и Нонне-Апельта. Минимальные патологические изменения в спинномозговой жидкости следующие: содержание белка, начиная с 0,4%, цитоз - 8 клеток в 1 мкл, глобулиновые реакции (реакция Нонне-Апельта++, реакция Панди+++; реакция Ланге - больше 2-х 2-ек в цифровом значении, положительная РВ). Показатели выше указанных, будучи изолированными, свидетельствуют о выраженных патологических изменениях в спинномозговой жидкости. Патологической считается также ликвор, в котором несколько показателей изменены соответственно данным минимальной патологии, а РВ положительна. Концентрация белка в ликворе свыше 400 мг/л и число клеток более 5000 на 1 л свидетельствуют о воспалительном процессе в ЦНС. Для обозначения позитивности глобулиновых реакций и РВ применяется система четырех плюсов; резко положительный результат (4+), положительный - 3+, слабоположительный - 2+ и сомнительный - 1+.
     В серологической лаборатории ставятся РВ, реакция Ланге с коллоидным золотом, РИТ, РИФ, РИФ-ц, ТРНА, либо FTAABS, либо IgM TPHA. Отрицательная ТРНА, либо FTAABS исключает нейросифилис. Положительная IgM TPHA со спинномозговой жидкостью и индекс ТРНА свыше 10 подтверждают наличие сифилитического процесса в ЦНС. Использование РИФ целесообразно при ликвородиагностике сифилиса. Особенно высокочувствителен и специфичен тест с цельным ликвором (РИФ-ц). Применение РИФ РИБТ и IgM ТРНА расширяет возможности выявления сифилитического поражения нервной системы.
     При ранних формах нейросифилиса более  выражены количественные отклонения цитоза, концентрации белка, сочетающиеся с  минимальной патологией коллоидной реакции. Тяжелые паренхиматозные  сифилитические поражения головного  и спинного мозга сопровождаются выраженными изменениями коллоидных реакций до пяти или шести «шестерок» в реакции Ланге. Реакция Вассермана в спинномозговой жидкости иногда может  быть ложноотрицательной или ложноположительный. Положительные неспецифические  данные реакции Вассермана в спинномозговой жидкости могут наблюдаться при  опухолях мозга, эхинококкозе, цистицеркозе, рассеянном склерозе и паркинсонизме. 

2 Гонорея 

     Гонорея – венерическое заболевание, передаваемое в основном при интимных контактах, вызываемое гонококком.

     Морфология, устойчивость и культуральные свойства гонококков

     Возбудитель грамотрицательный диплококк, адсорбирующийся на поверхности эпителиальных клеток, способный проникать в межклеточные щели с образованием микроколоний, защищенных от воздействия антител и клеточных факторов иммунитета. Характерно внутриклеточное расположение возбудителей в сегментоядерных лейкоцитах на всех стадиях процесса, особенно при обильном гнойном отделяемом. Эндоцитобиоз – внутриклеточная персистенция гонококков позволяет оставаться недоступными действию антибиотиков. В организме больных гонококки претерпевают L-трансформацию после применения химиотерапевтических средств или при хроническом течении заболевания.
     На  ультратонких срезах у гонококков выявляются клеточная стенка, цитоплазматическая мембрана, цитоплазма с множественными рибосомами, многочисленными полирибосомами, лизосомами и нуклеоид с нитями ДНК. На поверхности гонококков выявляются тонкие трубчатые нити – пили. Им приписывают способность гонококков передавать генетические свойства, в  частности, устойчивость к антибиотикам, способность прилипать к клеткам  эпителия хозяина и ряд других биологических особенностей. С пилями, по-видимому, связан механизм передачи генетической информации к способности переноса плазмид и ?-лактамазопродуцирующих штаммов гонококков. Устойчивость ?-лактамазопродуцирующих гонококков к антибиотикам обусловлена полиантибиотикорезистентностью, и такими адаптационными механизмами как L-трансформация, образование спороподобных форм и др.. Помимо штаммов, образующих ?-лактамазопродуцируюших клонов гонококков, существуют штаммы трансформирующиеся в L-формы. Для начальной стадии L-трансформации характерен множественный нуклеоид с последующим истончением наружной стенки, потерей ее структуры и фестончатости. L-трансформация может происходить спонтанно или при действии антибиотиков. После прекращения действия препарата, вызвавшего образование L-форм, наступает реверсия. При L-трансформации между наружной стенкой и цитоплазматической мембраной образуются элементарные тельца – округлые образования разной величины, из которых образуются типичные гонококки. Именно биологическое свойство образовывать нестабильные варианты L-форм рассматривается как одна из наиболее частых причин рецидивов болезни. Отдельные штаммы гонококков вырабатывают фермент пенициллиназу, что объясняет их устойчивость к пенициллину и его дериватам.

     2.2 Формы гонорейной инфекции

     Патологический  процесс чаще ограничивается местом первоначального внедрения возбудителя. В связи с этим принято различать  гонорею:
    мочеполовых органов (генитальная),
    экстрагенитальную (гонорея прямой кишки, глотки, рта, миндалин, глаз)
    метастатическую (диссеминированная), являющуюся осложнением двух первых.

     2.3 Диагностика гонококковой инфекции

     В диагностике гонореи решающее значение имеют лабораторные данные. Этиологическая диагностика проводится с использованием бактериоскопических и бактериологических методов. Если в препарате при  бактериоскопии обнаружены типичные гонококки, то культуральное исследование не проводится. Топическая диагностика применяется  обязательно для точного определения  локализации воспалительного процесса в уретре с помощью двухстаканной  пробы. Более точная топическая диагностика  осуществляется методом уретроскопии, но этот способ исследования рекомендуется  применять только при хронической  форме процесса, так как при  острой форме данная процедура может  способствовать распространению инфекции в вышележащие отделы мочеполовой  системы.
     Методы  лабораторной диагностики гонококковой инфекции:
    микроскопические (бактериоскопические),
    культуральные (бактериологические).
    молекулярно-биологические.

     2.3.1 Микроскопические методы исследования

     В случае если нефиксированный препарат доставляется в лабораторию: препарат фиксируют 960 спиртом или трехкратным проведением стекла через пламя горелки.
     Хранение  мазков:
     Фиксированные препараты можно хранить при  комнатной температуре в течение  нескольких дней.
    Окраска метиленовым синим:
     Окраска метиленовым синим является ориентировочной  и позволяет оценить морфологию и расположение микроорганизмов  в мазке. Можно использовать водный или спиртовой растворы метиленового синего. Использование спиртового раствора позволяет сократить время фиксации препарата, не снижал качества окраски.
    Окраска по методу Грама:
     При окраске по методу Грама в препарате  выявляются тинкториальные свойства бактерий. В зависимости от химической структуры  клеточной стенки (наличие или  отсутствие тейхоевых кислот) бактерии либо обладают способностью удерживать комплекс кристаллического фиолетового с йодом и устойчивы к обесцвечиванию спиртом (грамположительные), либо нет (грамотрицательные).
    Микроскопия окрашенных препаратов.
     При проведении микроскопического исследования последовательно оцениваются препараты, окрашенные двумя способами: метиленовым  синим и по Граму. Нельзя выносить заключение по результатам просмотра лишь одного препарата.
     Окраска метиленовым синим позволяет  сделать заключение о наличии  воспаления и выявлении морфотипа  бактерий. При окраске по Граму  возможно выявление грамотрицательных  диплококков. При микроскопии препаратов врачом-лаборантом оценивается наличие  эпителия, количество лейкоцитов, эритроцитов, морфотип бактерий (лактобациллы, кокки, коккобациллы), наличие вне- и внутриклеточно расположенных диплококков.
     Мазки, окрашенные метиленовым синим или  по Граму, оцениваются при двух увеличениях (с применением объективов xl0, х100, т.е. при увеличении соответственно в 100 и 1000 раз). Микроскопическое исследование следует начинать с малого увеличения (х100), позволяющего обнаружить клинический материал на стекле, оценить адекватность взятия из соответствующего анатомического участка, определить наличие «загрязнений» из других анатомических участков, выбрать участок препарата для дальнейшего исследования при большом увеличении (х1000). Микроскопия при большом увеличении позволяет выявить и оценить воспалительную реакцию и наличие микроорганизмов. При увеличении xl000 с иммерсией подсчет лейкоцитов следует проводить в пяти полях зрения. При этом особое внимание следует уделить поиску внутриклеточных диплококков в лейкоцитах.
     Диагноз уретрита у мужчин устанавливается  на основании обнаружения 4 и более  лейкоцитов в поле зрения микроскопа при увеличении xl000. При наличии цервицита количество полиморфно ядерных лейкоцитов повышено (более 10 при увеличении х1000). При клиническом исследовании следует принимать во внимание наличие или отсутствие слизисто-гнойных цервикальных выделений (зеленовато-желтый гной со слизью на белом ватном тампоне).
     При исследовании вагинального мазка у  женщин нужно помнить о том, что число лейкоцитов зависит от индивидуальных особенностей организма - от дня менструального цикла, наличия внутриматочной спирали и т.д. Поэтому для диагностикки слизисто-гнойного цервицита рекомендуется использовать оба критерия, т.е. наличие клинических проявлений и воспалительный характер цервикального мазка.
     Диагноз уретрита у женщин подтверждается нахождением  более 10 лейкоцитов в поле зрения при  увеличении микроскопах 1000, Следует  помнить, что если во влагалище и/или  шейке матки имеется патологический воспалительный процесс и при этом наблюдаются выделения из влагалища, уретральный мазок всегда загрязнён материалом этих выделений (клетки плоского эпителия, лейкоциты, вагинальная микрофлора) и не годится для дальнейшей оценки, поскольку он не имеет ничего общего с уретрой.
    Оценка  результатов микроскопии окрашенных мазков.
     На  основании микроскопического исследования диагноз гонореи устанавливается  по трем признакам гонококка:
    его форме;
    расположению;
    окраске.
     Если  же отсутствует хотя бы один из них, требуется культуральное исследование.
     Решающее  значение при микроскопической диагностике  гонореи имеет учет расположения диплококков. Гонококки в основном располагаются внутри лейкоцитов и эпителиальных клеток. На основании обнаружения диплококков, расположенных вне клеток, микроскопический диагноз гонореи не ставится, требуется культуральное исследование.
     Окраска гонококков (по методу Грама) - красно розовая (грамотрицательный диплококк). При этом ядра лейкоцитов и эпителиальных клеток окрашиваются т фиолетовый цвет.
     Оценка мазков, окрашенных метиленовым синим
     При микроскопии препарата видны:
    ядра клеток, окрашенные в синий цвет;
    цитоплазма, окрашенная в голубой цвет разной интенсивности;
    бактериальная микрофлора, окрашенная в синий цвет разной интенсивности.
     Окраска метиленовым синим является ориентировочной  и позволяет оценить морфологию (форму) и расположение микроорганизмов  в мазке (внутри лейкоцита и на эпителиальных клетках).
и т.д.................


Перейти к полному тексту работы


Скачать работу с онлайн повышением уникальности до 90% по antiplagiat.ru, etxt.ru или advego.ru


Смотреть полный текст работы бесплатно


Смотреть похожие работы


* Примечание. Уникальность работы указана на дату публикации, текущее значение может отличаться от указанного.